轻松在线差异基因/物种分析和可视化
7.1 limma用于转录组reads-count数据差异基因分析
做转录组差异分析,我们通常是基于reads-count
数据,这个数据可以来源于Salmon
的结果、STAR
的结果或从网上下载的数据。
这个数据怎么获取,具体见下方的教程。
7.1.1 输入数据1:reads-count数据
现在假如我们已经拿到了8个样品的reads-count
数据。点击下载ehbio_trans.Count_matrix.txt。
这是TAB
键分割的文本文件:
第一列是基因名字,基因名可以是
ENSEMBL ID
、Gene symbol
或任意其它ID
,但不允许有重复的名字。第一行除第一列
ENSG
(第一列的名字可以是任意字符,不影响)外,其它列都是样本名字。样本名字建议只包括数字
,字母
和下划线
。尤其是不能有-
,不能以数字开头,最好下划线
都不要有。数据矩阵中的其它内容都是整数。
从第二行起,每一行代表一个基因在每个样品里面的原始
reads-count
值。
## untrt_N61311 untrt_N052611 untrt_N080611 untrt_N061011
## ENSG00000227232 13 25 23 24
## ENSG00000278267 0 5 3 4
## ENSG00000241860 3 11 1 5
## ENSG00000279457 46 90 73 49
## ENSG00000228463 5 4 13 6
## ENSG00000237094 0 16 7 2
## trt_N61311 trt_N052611 trt_N080611 trt_N061011
## ENSG00000227232 12 12 22 22
## ENSG00000278267 2 4 3 1
## ENSG00000241860 3 2 0 2
## ENSG00000279457 52 46 89 31
## ENSG00000228463 5 0 11 4
## ENSG00000237094 1 3 3 2
7.1.2 输入数据2:样本分组信息 (sampleFile)
既然做差异基因分析,通常是2组或多组之间的比较。如果是多组,也是两两组之间的组合比较。在上面的reads-count
矩阵中只有样本名称,但不知道哪些样本是来源于一个生物处理组的,如对照组或处理组等。所以需要提供这样一个文件,指示样本的属性信息,如所属组信息。这里有一个示例数据,sampleFile2.txt:
## conditions individual sizeFactor SV1 SV2 SV3
## untrt_N61311 untrt N61311 1.0211325 -0.101 -0.494 -0.316
## untrt_N052611 untrt N052611 1.1803986 0.018 -0.170 0.588
## untrt_N080611 untrt N080611 1.1796083 -0.429 0.376 -0.089
## untrt_N061011 untrt N061011 0.9232642 0.535 0.241 -0.176
## trt_N61311 trt N61311 0.8939275 -0.125 -0.496 -0.366
## trt_N052611 trt N052611 0.6709229 0.036 -0.151 0.591
需要注意的有一下几点:
样本分组信息
sampleFile
文件至少需要有2
列。第一列表示样本名字,需要与
reads-count
文件中的第一行中的样本名字能对应上。顺序没有关系。大小写要一致。比如在sampleFile
中样本名写做untrt_N61311
,而在reas-count
文件中写做UNtrt_N61311
或untrt N61311
,大小写不一致是不对的。一定注意是完全一致。第二列表示样本分组信息。示例中前4个文件属于
untrt
组,后4个文件属于trt
组。一个组的样本不要求必须挨着。样本的组名不要有除数字
,字母
和下划线
之外的字符。其它列都是样本的属性信息,可有可无。有时也会用到,后面会有例子演示。
7.1.3 导入数据,设置参数
表达矩阵通常比较大,在1M左右或更大,直接粘贴进入浏览器的文本域会导致浏览器变卡。这不是网站速度慢的问题,是浏览器自身问题,不适合承载太大的数据。这里建议用上传的方式,免费注册一个账户,按下图所示上传数据。
数据上传好之后,需要刷新工具页面,才可以看到新上传的数据。选择相应的数据,如下图
依次设置参数:
Input way
设置为Select uploaded file
Upload main expression data (Gene X Sample)
选择上传的reads-count
文件Select sample attributes file (first column must match first row of expression data matrix)
选择上传的sampleFile2.txt
文件选择
Expression data type
为Raw reads count
选择
Group
为conditions
(sampleFile2.txt中表示分组的列)
其它参数可以暂时先不管。
点击提交,获得结果。
7.1.4 差异分析结果报告
默认输出一个结果文档,1
个大章节,2
个小章节,分别是整体丰度图谱比较和差异分析结果。点击各个子章节可以展开查看具体内容。
7.1.4.1 1.1 所有样品丰度图谱展示 (聚类热图和PCA)
1.1.1 是样品表达图谱聚类热图,一幅下三角热图,一幅交互式热图。展示样本之间的相似性关系。标准化后的表达值也可从这下载。该工具主要定位是差异分析,可视化也有一些,不过都不能调整参数。如果需要进一步可视化,可以基于这里提供的表达数据,通过BIC的其它工具进行进一步可视化分析。后面我们会讲到。
Figure 7.3: 点击理解图形解读 1. 这个热图上面的树是根据系统发育关系画的吗? 2. 图形解读系列 | 给你5个示例,你能看懂常用热图使用吗?
1.1.2 是样本表达图谱的PCA图谱绘制(静态图和交互图),在PC1轴上样品按处理和对照分成2簇,在PC2轴上,样品的分布与个体来源相关(这里是一个信号,我们后面会提到,感兴趣的可以先看下高通量数据中批次效应的鉴定和处理 - 系列总结和更新)。默认出图不太美观,数据可以下载下来,用我们的PCoA工具进行进一步绘制。
Figure 7.4: 点击理解图形解读 1. 一文读懂PCA分析 (原理、算法、解释和可视化) 2. 一文学会PCA/PCoA相关统计检验(PERMANOVA)和可视化
7.1.4.2 1.2 差异分析结果
因为只有一个比较组,所以只有1.2.1的结果;如果有多个比较组,还会有1.2.2 DE analysis results (A vs B)
, 1.2.3 DE analysis results (A vs C)
等。
主要展现的是交互式差异火山图,鼠标悬浮可直接查看差异基因。火山图的数据也可以拿下来用BIC绘图平台定制绘制。
Figure 7.5: Volcano plot | 别再问我这为什么是火山图
差异分析的表格数据可下载用于进一步地分析和可视化。如下包括绘制火山图的数据、上调基因的表达矩阵、下调基因的表达矩阵、差异基因的列表等。
往期精品(点击图片直达文字对应教程)
后台回复“生信宝典福利第一波”或点击阅读原文获取教程合集